نموذج امتحان الكفاءة المهنية للترقي في الدرجة بإطار مهندسي الدولة - وزارة الفلاحة والتنمية القروية 2003 - وقاية النباتات (الفيتياتريا) - الاختبار الكتابي

Ce modèle est l'épreuve écrite de l'examen d'aptitude professionnelle pour l'avancement de grade dans le cadre d'ingénieur d'État, option Phytiatrie (protection des plantes) — Ministère de l'Agriculture et du Développement Rural, session des 7-8 décembre 2003. Durée : 4 heures, coefficient 5. Barème : sujet au choix 10/20, questions obligatoires 8/20, présentation 2/20. Voici une correction proposée.

💡 Les deux sujets laissent choisir la culture : prenez celle que vous connaissez le mieux sur le terrain et donnez systématiquement le nom commun + le nom scientifique de chaque agent, c'est noté explicitement. La correction ci-dessous prend le blé (sujet 1) et la pomme de terre (sujet 2) comme exemples.

Sujet 1 — Agents biotiques d'une grande culture : exemple du blé

1) Principaux agents biotiques (2 points)

2) Cycles biologiques de trois agents (5 points)

a) Cécidomyie de Hesse (Mayetiola destructor) — un des ravageurs majeurs du blé en zone semi-aride.

• Adulte : petit diptère qui émerge après les premières pluies d'automne ; vie très courte (quelques jours) ; la femelle pond sur la face supérieure des jeunes feuilles. Importance : fixe le moment d'infestation (lien avec la date de semis).
• Œuf → larve : la larve néonate descend le long de la gaine jusqu'à la base de la tige ou au-dessus d'un nœud et se nourrit des tissus. C'est le stade nuisible : arrêt de croissance et mort des talles au tallage, tiges affaiblies et verse à l'épiaison.
• Pupe (« puparium », stade « graine de lin ») : forme de résistance dans les chaumes et repousses, qui assure la survie estivale (diapause) jusqu'aux pluies suivantes. Importance : c'est la cible de la lutte culturale (destruction des chaumes).
• Plusieurs générations par campagne (automne-hiver puis printemps), selon l'humidité.

b) Septoriose (Zymoseptoria tritici)

• Inoculum primaire : ascospores (dispersées par le vent) et pycnides sur les chaumes et repousses ; contaminations dès la levée.
• Infection : pénétration par les stomates, longue période de latence (environ 2 à 4 semaines selon la température) sans symptôme.
• Sporulation : nécroses portant des pycnides noires ; les pycnidiospores sont dispersées par les éclaboussures de pluie vers les feuilles supérieures : cycles secondaires (maladie polycyclique). Étape décisive : contamination des trois dernières feuilles, qui font l'essentiel du remplissage du grain.
• Conservation : sur résidus de culture d'une saison à l'autre.

c) Rouille brune (Puccinia triticina)

• Urédospores transportées par le vent sur de longues distances, ou issues de repousses (« pont vert ») : inoculum primaire.
• Germination en présence d'eau libre (rosée) et de températures douces, pénétration par les stomates ; latence courte (≈ 7 à 10 jours) : multiplication explosive au printemps, phase la plus dommageable (réduction de la surface foliaire, échaudage).
• Téleutospores en fin de cycle ; la phase sexuée exige un hôte alternant (Thalictrum), rarement fonctionnelle : en pratique c'est le cycle urédien qui entretient l'épidémie.

3) Méthodes de lutte préventive et curative (3 points)

• Cécidomyie : préventif — variétés résistantes (méthode la plus efficace), enfouissement ou destruction des chaumes et repousses, rotation, date de semis adaptée, traitement insecticide des semences ; curatif — peu efficace une fois la larve installée sous la gaine.
• Septoriose : préventif — rotation, enfouissement des résidus, variétés tolérantes, densité et fertilisation azotée raisonnées, semis non trop précoce ; curatif — fongicides foliaires (triazoles, strobilurines, en alternance) déclenchés selon les seuils, en protégeant la dernière feuille.
• Rouille brune : préventif — variétés résistantes (gènes Lr), destruction des repousses ; curatif — fongicides (triazoles) dès les premières pustules sur les feuilles supérieures.

Sujet 2 — Organismes transmis par les semences et plants : exemple de la pomme de terre

1) Inventaire avec affiliation taxonomique (2 points)

2) Techniques de diagnose (4 points)

• Inspection visuelle au champ (contrôles de certification) et des tubercules (coupe : anneau vasculaire, pourritures).
• Tests sérologiques ELISA : détection des virus (PVY, PLRV) sur feuilles ou germes, en routine sur grands échantillons.
• Méthodes moléculaires (PCR, RT-PCR) : détection sensible et spécifique des virus et bactéries de quarantaine, même sans symptômes.
• Isolement sur milieux de culture (milieux semi-sélectifs) puis identification (caractères culturaux, biochimiques) pour bactéries et champignons ; test de Koch si nécessaire.
• Immunofluorescence et tests d'exsudation pour les bactéries vasculaires.
• Plantes indicatrices (biotest) pour les virus.
• Extraction des kystes de nématodes de la terre adhérente (flottaison, appareil de Fenwick) et identification morphologique ou moléculaire.
• Germination en buvard/étuve (« blotter test ») pour les semences de céréales et légumineuses.

3) Méthodes de désinfection des semences ou plants (4 points)

• Préventif à la base : utiliser des plants certifiés issus de schémas de production à partir de matériel sain (vitroplants, minitubercules), contrôlés au champ et en laboratoire.
• Traitement chimique des tubercules par poudrage ou pulvérisation de fongicides homologués (contre rhizoctone, gale argentée, fusariose) ; traitement des semences de céréales par enrobage (contre carie, charbon, fusarioses).
• Traitement physique : thermothérapie (eau chaude, air chaud) pour certaines semences et organes de multiplication ; triage et élimination des tubercules atteints ; séchage et cicatrisation avant stockage.
• Hygiène : désinfection des locaux, caisses et calibreuses ; stockage au froid ; protection contre la teigne en magasin.
• Pour les virus et bactéries vasculaires, aucun traitement chimique n'est curatif : seule l'élimination du lot ou l'assainissement par culture de méristèmes est possible.

Questions à traiter obligatoirement (8/20)

1) Cinq institutions nationales œuvrant en protection des plantes (1 point)

• Direction de la Protection des Végétaux, des Contrôles Techniques et de la Répression des Fraudes (DPVCTRF) du ministère de l'Agriculture, avec ses services régionaux.
• Institut National de la Recherche Agronomique (INRA).
• Institut Agronomique et Vétérinaire Hassan II (IAV) — département de protection des plantes.
• École Nationale d'Agriculture de Meknès (ENA).
• Établissement Autonome de Contrôle et de Coordination des Exportations (EACCE) ; Centre national de lutte antiacridienne ; Offices régionaux de mise en valeur agricole (ORMVA).

💡 Depuis 2009-2010, le contrôle phytosanitaire de la DPVCTRF et les missions de l'EACCE ont été regroupés dans l'ONSSA ; à l'examen de 2003, on citait les structures ci-dessus.

2) Thermothérapie (2 points)

Définition : traitement d'assainissement par la chaleur (eau chaude, air chaud ou vapeur) appliqué à des semences, boutures, bulbes, tubercules ou plantes entières, à un couple température × durée qui tue ou inactive le parasite sans tuer le matériel végétal (marge étroite entre les deux).

Exemples :

• Charbon nu du blé et de l'orge (Ustilago spp., interne à l'embryon) : trempage des semences dans l'eau chaude.
• Nématode des tiges et bulbes (Ditylenchus dipsaci) sur bulbes d'ail, de narcisse : bain d'eau chaude.
• Virus (pomme de terre, agrumes, vigne, arbres fruitiers) : thermothérapie de plantes en chambre chaude combinée à la culture de méristèmes ; phytoplasmes de la vigne : traitement des bois à l'eau chaude.

3) Trois précautions contre la résistance aux pesticides (1 point)

• Alterner ou associer des matières actives à modes d'action différents (familles chimiques différentes).
• Respecter la dose homologuée (pas de sous-dosage) et limiter le nombre d'applications par saison du même produit.
• Intégrer les méthodes non chimiques (variétés résistantes, rotations, lutte biologique, seuils d'intervention) : lutte intégrée.

4) Parasite obligatoire (2 points)

Définition : parasite qui ne peut se développer et se multiplier que sur un hôte vivant ; il ne peut pas être cultivé sur milieu artificiel inerte (biotrophe strict).

Exemples : les rouilles (Puccinia spp.), les oïdiums (Blumeria graminis, Erysiphe spp.), les mildious de type Plasmopara viticola ; les virus ; les plantes parasites comme l'orobanche.

5) Trois applications de la biotechnologie en protection des plantes (2 points)

• Culture in vitro de méristèmes (souvent avec thermothérapie) : production de plants indemnes de virus.
• Diagnostic : anticorps monoclonaux (ELISA), PCR, pour une détection précoce et précise des pathogènes.
• Création de variétés résistantes : sélection assistée par marqueurs moléculaires, plantes transgéniques (par exemple résistance aux insectes par gènes de Bacillus thuringiensis).
• (également) production de biopesticides (Bacillus thuringiensis, Trichoderma, baculovirus).